Segurança Alimentar Desde 2004 a tratar da Segurança Alimentar em Portugal
Regulamento (CE) n.° 2091/2002 da Comissão
Jornal Oficial nº L 322 de 27/11/2002 p. 0011 – 0027
A COMISSÃO DAS COMUNIDADES EUROPEIAS,
Tendo em conta o Tratado que institui a Comunidade Europeia,
Tendo em conta o Regulamento (CEE) n.o 1576/89 do Conselho, de 29 de Maio de 1989, que estabelece as regras gerais relativas à definição, à designação e à apresentação das bebidas espirituosas(1), com a redacção que lhe foi dada pelo Acto de Adesão da Áustria, da Finlândia e da Suécia, e, nomeadamente, o n.o 8 do seu artigo 4.o,
Considerando o seguinte:
(1) O Regulamento (CE) n.o 2870/2000 da Comissão, de 19 de Dezembro de 2000, que estabelece métodos de análise comunitários de referência aplicáveis no sector das bebidas espirituosas(2), descreve os métodos em causa no seu anexo.
(2) No âmbito de um projecto de investigação apoiado pela Comissão, foram validados de acordo com procedimentos reconhecidos internacionalmente quatro métodos de análise, aplicáveis à determinação do trans-anetole em bebidas espirituosas anisadas, do ácido glicirrízico e de calconas em pastis e da gema de ovo em licores de ovos ou à base de ovos.
(3) Esses quatro métodos podem ser reconhecidos como métodos comunitários de referência, devendo ser incluídos no anexo do Regulamento (CE) n.o 2870/2000.
(4) As medidas previstas no presente regulamento estão em conformidade com o parecer do Comité de Execução para as Bebidas Espirituosas,
ADOPTOU O PRESENTE REGULAMENTO:
Artigo 1.o
O anexo do Regulamento (CE) n.o 2870/2000 é alterado do seguinte modo:
1. No resumo introdutório do anexo, “(p.m.)” é suprimido nos pontos V, VI, VII e IX.
2. São aditados a seguir ao capítulo III os capítulos V, VI, VII e IX constantes do anexo do presente regulamento.
Artigo 2.o
O presente regulamento entra em vigor no sétimo dia seguinte ao da sua publicação no Jornal Oficial das Comunidades Europeias.
O presente regulamento é obrigatório em todos os seus elementos e directamente aplicável em todos os Estados-Membros.
Feito em Bruxelas, em 26 de Novembro de 2002.
Pela Comissão
Franz Fischler
Membro da Comissão
(1) JO L 160 de 12.6.1989, p. 1.
(2) JO L 333 de 29.12.2000, p. 20.
ANEXO
V. ANETOLE. DETERMINAÇÃO DO TRANS-ANETOLE EM BEBIDAS ESPIRITUOSAS POR CROMATOGRAFIA EM FASE GASOSA
1. Âmbito
Este método é adequado para a determinação do trans-anetole em bebidas espirituosas anisadas por cromatografia em fase gasosa em coluna capilar.
2. Referências normativas
ISO 3696:1987 Water for analytical laboratory use – Specifications and test methods (Água para fins laboratoriais analíticos – Especificações e métodos de ensaio).
3. Princípio
Determinação da concentração de trans-anetole na bebida espirituosa por cromatografia em fase gasosa. Adição da mesma quantidade de um padrão interno – por exemplo 4-alilanisol (estragol), se não estiver naturalmente presente na amostra – à toma para análise e a uma solução de referência de trans-anetole de concentração conhecida e diluição de ambas com uma solução a 45 % de etanol; injecção directa de ambas no sistema de cromatografia em fase gasosa. No caso dos licores com teor de açúcares elevado, é necessária uma extracção antes da preparação e análise da amostra.
4. Material e reagentes
O grau de pureza mínimo dos reagentes a utilizar nas análises é de 98 %. Utilizar exclusivamente água de grau não inferior a 3 (escala da norma ISO 3696).
Os produtos químicos de referência serão conservados no frio (cerca de 4 °C), ao abrigo da luz, em recipientes de alumínio ou garrafas de reagentes de vidro ambarizado. As tampas devem, de preferência, ser dotadas de uma vedação de alumínio. Se o trans-anetole se encontrar no estado cristalino, será necessário liquefazê-lo antes de o utilizar, mas sem que a temperatura exceda 35 °C.
4.1. Etanol a 96 % vol. (CAS 64-17-5)
4.2. 1-metoxi-4-(1-propenil) benzeno (trans-anetole) (CAS 4180-23-8)
4.3. 4-alilanisol (estragol) (CAS 140-67-0), padrão interno sugerido
4.4. Etanol a 45 % vol.
Adicionar 560 g de água destilada a 378 g de etanol a 96 % vol.
4.5. Preparação das soluções-padrão
Todas as soluções-padrão serão conservadas à temperatura ambiente (15 °C-35 °C), ao abrigo da luz, em recipientes de alumínio ou garrafas de reagentes de vidro ambarizado. As tampas devem, de preferência, ser dotadas de uma vedação de alumínio.
O trans-anetole e o 4-alilanisol são praticamente insolúveis em água, pelo que é necessário dissolvê-los numa pequena quantidade de etanol a 96 % vol. (4.1) antes de adicionar o etanol a 45 % vol (4.4).
As soluções de reserva devem ser preparadas de fresco todas as semanas.
4.5.1. Solução-padrão A
Solução de reserva de trans-anetole (concentração: 2 g/l)
Pesar 40 mg de trans-anetole (4.2) num balão volumétrico de 20 ml (ou 400 mg num balão de 200 ml, etc.). Juntar uma pequena quantidade de etanol a 96 % vol. (4.1), completar o volume com etanol a 45 % vol (4.4) e homogeneizar bem.
4.5.2. Solução do padrão interno, B
Solução de reserva do padrão interno, por exemplo estragol (concentração: 2 g/l)
Pesar 40 mg de estragol (4.3) num balão volumétrico de 20 ml (ou 400 mg num balão de 200 ml, etc.). Juntar uma pequena quantidade de etanol a 96 % vol (4.1), completar o volume com etanol a 45 % vol (4.4) e homogeneizar bem.
4.5.3. Soluções utilizadas para verificar a linearidade de resposta do detector de ionização de chama
É necessário verificar a linearidade de resposta do detector de ionização de chama na análise para uma gama de concentrações de trans-anetole em bebidas espirituosas compreendida entre 0 g/l e 2,5 g/l. Na análise, as amostras de teor desconhecido de bebidas espirituosas a analisar devem ser diluídas dez vezes (8.3). Para as condições analíticas descritas no método, preparam-se como segue soluções de reserva correspondentes às concentrações de 0, 0,05, 0,1, 0,15, 0,2 e 0,25 g/l de trans-anetole na amostra a analisar: pipetar 0,5, 1, 1,5, 2 e 2,5 ml da solução de reserva A (4.5.1) para uma série de balões volumétricos de 20 ml; pipetar para cada balão 2 ml da solução do padrão interno, B (4.5.2), completar o volume com etanol a 45 % vol. (4.4) e homogeneizar bem.
Para solução de concentração 0 g/l é utilizado o branco (8.4).
4.5.4. Solução-padrão C
Pipetar 2 ml da solução-padrão A (4.5.1) para um balão volumétrico de 20 ml, adicionar 2 ml da solução do padrão interno, B (4.5.2), completar o volume com etanol a 45 % vol. (4.4) e homogeneizar bem.
5. Aparelhagem e equipamento
5.1. Cromatógrafo de fase gasosa de coluna capilar equipado com um detector de ionização de chama e um integrador ou outro sistema de tratamento de dados para a medição das áreas ou alturas dos picos e um amostrador automático ou os dispositivos necessários para a injecção manual das amostras.
5.2. Injector com/sem divisor da amostra (split/splitless)
5.3. Coluna capilar, por exemplo:
Comprimento: 50 m
Diâmetro interno: 0,32 mm
Espessura do filme: 0,2 μm
Fase estacionária: FFAP – polímero poroso reticulado de ácido tereftálico e polietilenoglicol, modificado
5.4. Material corrente de laboratório: material de vidro volumétrico da classe A, balança analítica (precisão: ± 0,1 mg).
6. Condições cromatográficas
O tipo e dimensões da coluna e as condições cromatográficas em fase gasosa devem permitir separar o anetole do padrão interno e ambos das substâncias interferentes eventualmente presentes. Condições típicas da coluna indicada como exemplo (5.3):
6.1. Gás vector: hélio pro analise
6.2. Caudal: 2 ml/minuto
6.3. Temperatura no injector: 250 °C
6.4. Temperatura no detector: 250 °C
6.5. Condições de temperatura da fornalha: isotérmica a 180 °C; tempo de funcionamento: 10 minutos.
6.6. Volume injectado: 1 μl, com divisão (split) de 1:40
7. Amostras
As amostras devem ser armazenadas à temperatura ambiente, ao abrigo da luz e de baixas temperaturas.
8. Técnica
8.1. Pesquisa de estragol na amostra
Para garantir que o estragol não está naturalmente presente na amostra, proceder-se-á a uma análise em branco, sem adição do padrão interno. Se o estragol estiver naturalmente presente, será necessário escolher outro padrão interno (por exemplo mentol).
Pipetar 2 ml da amostra para um balão volumétrico de 20 ml, completar o volume com etanol a 45 % vol. (4.4) e homogeneizar bem.
8.2. Preparação das amostras de teor desconhecido
Pipetar 2 ml da amostra para um balão volumétrico de 20 ml, adicionar 2 ml da solução do padrão interno, B (4.5.2), completar o volume com etanol a 45 % vol. (4.4) e homogeneizar bem.
8.3. Branco
Pipetar 2 ml da solução do padrão interno, B (4.5.2), para um balão volumétrico de 20 ml, completar o volume com etanol a 45 % vol. (4.4) e homogeneizar bem.
8.4. Teste de linearidade
Antes de iniciar as análises, é necessário confirmar a linearidade de resposta do detector de ionização de chama, analisando, para o efeito, em triplicado, cada solução-padrão de verificação da linearidade (4.5.3).
Com base nas áreas ou alturas dos picos obtidas pelo integrador para cada injecção, representar graficamente a concentração da solução-mãe respectiva, em g/l, em função da relação R correspondente.
R= altura ou área do pico do trans-anetole dividida pela altura ou área do pico do estragol.
Deve ser obtido um traçado linear.
8.5. Determinação
Injectar sucessivamente o branco (8.3), a solução-padrão C (4.5.4), um dos padrões de verificação da linearidade (4.5.3), que agirá como amostra de controlo de qualidade (a escolher em função da concentração provável de trans-anetole na amostra de teor desconhecido), e cinco amostras de teor desconhecido (8.2). Para garantir estabilidade analítica, injectar uma amostra de verificação da linearidade (controlo de qualidade) após cada conjunto de cinco amostras de teor desconhecido.
9. Cálculo do factor de resposta
Medir as áreas (com um integrador ou outro sistema de tratamento de dados) ou as alturas (por integração manual) dos picos do trans-anetole e do padrão interno.
9.1. Cálculo do factor de resposta (RFi)
O factor de resposta é calculado do seguinte modo:
RFi = (Ci/área ou alturai)*(área ou altura pi/Cpi)
Em que:
Ci é a concentração de trans-anetole na solução-padrão A (4.5.1)
Cpi é a concentração de padrão interno na solução B (4.5.2)
área i é a área (ou altura) do pico do trans-anetole
áreapi é a área (ou altura) do pico do padrão interno
O RFi é calculado a partir das cinco amostras de solução C (4.5.4).
9.2. Análise das soluções de verificação da linearidade de resposta
Injectar as soluções de verificação da linearidade de resposta (4.5.3).
9.3. Análise da amostra
Injectar a amostra de teor desconhecido (8.2).
10. Cálculo dos resultados
A fórmula de cálculo da concentração de trans-anetole é a seguinte:
ci = Cpi * (área ou alturai/área ou alturapi)*RFi
Em que:
ci é a concentração desconhecida de trans-anetole
Cpi é a concentração de padrão interno na amostra de teor desconhecido (4.5.2)
área ou alturai é a área (ou altura) do pico do trans-anetole
área ou alturapi é a área (ou altura) do pico do padrão interno
RFi é o factor de resposta (calculado conforme indicado em 9.1)
A concentração de trans-anetole é expressa em grama por litro, com uma casa decimal.
11. Garantia de qualidade e controlo de qualidade
Os cromatogramas devem evidenciar a separação do anetole e do padrão interno entre si e de ambos de qualquer substância interferente. O valor de RFi é calculado a partir dos resultados das cinco injecções de solução C (4.5.4). Se o coeficiente de variação [CV (%) = desvio padrão/média*100] não exceder mais ou menos 1 %, o valor médio de RFi será aceitável.
O cálculo anterior será utilizado para determinar a concentração de trans-anetole na amostra seleccionada para o controlo de qualidade entre as soluções de verificação da linearidade (4.5.3).
Se os resultados médios calculados a partir da análise da solução de verificação da linearidade seleccionada para amostra de controlo de qualidade interno não se afastarem mais ou menos 2,5 % do valor teórico respectivo, os resultados obtidos para as amostras de teor desconhecido serão aceitáveis.
12. Tratamento de amostras de bebidas espirituosas com teores de açúcares elevados e de amostras de licores antes da análise por cromatografia em fase gasosa
Extracção do álcool da bebida espirituosa com teor de açúcares elevado, para possibilitar a determinação da concentração de trans-anetole por cromatografia em fase gasosa em coluna capilar.
12.1. Princípio
Toma-se uma alíquota da amostra de licor e adiciona-se-lhe o padrão interno, de modo a obter uma concentração semelhante à do analito (trans-anetole) no licor. Adiciona-se em seguida fosfato de sódio dodeca-hidratado e sulfato de amónio anidro. Agita-se bem a mistura resultante, arrefece-se, obtém-se a separação de duas fases e retira-se a fase (alcoólica) superior. Toma-se uma alíquota da fase alcoólica e dilui-se com solução de etanol a 45 % vol. (4.4) (nota: neste caso, não se adiciona padrão interno, por já ter sido anteriormente adicionado). Analisa-se a solução resultante por cromatografia em fase gasosa.
12.2. Material e reagentes
O grau de pureza mínimo dos reagentes a utilizar na extracção é de 99 %.
12.2.1. Sulfato de amónio anidro (CAS 7783-20-2)
12.2.2. Fosfato dibásico de sódio dodeca-hidratado (CAS 10039-32-4)
12.3. Aparelhagem e equipamento
Erlenmeyers, ampolas de decantação, frigorífico.
12.4. Técnica
12.4.1. Pesquisa de estragol na amostra
Para garantir que o estragol não está naturalmente presente na amostra, proceder-se-á a uma extracção em branco (12.6.2) e a análise será efectuada sem adição do padrão interno. Se o estragol estiver naturalmente presente, será necessário escolher outro padrão interno.
12.4.2. Extracção
Pipetar 5 ml de etanol a 96 % vol. (4.1) para um erlenmeyer e adicionar 50 mg do padrão interno (4.3), pesados no erlenmeyer, e 50 ml de amostra. Adicionar 12 g de sulfato de amónio anidro (12.2.1) e 8,6 g de fosfato dibásico de sódio dodeca-hidratado (12.2.2). Rolhar o erlenmeyer.
Agitar o erlenmeyer durante, pelo menos, 30 minutos. Pode ser utilizado um agitador mecânico, mas não uma barra de agitação magnética revestida a teflon, que absorveria parte do analito. Os sais adicionados não se dissolverão completamente.
Colocar o erlenmeyer tapado no frigorífico, a temperatura inferior a 5 °C, durante pelo menos duas horas.
Devem separar-se duas fases líquidas distintas e um resíduo sólido. A fase alcoólica deve ser límpida; caso não seja, recolocar o recipiente no frigorífico até a separação dar lugar a uma fase límpida.
Quando a fase alcoólica se apresentar límpida, tomar cuidadosamente uma alíquota (por exemplo, 10 ml), sem perturbar a fase aquosa, colocá-la num frasco de vidro ambarizado e fechar bem este último.
12.4.3. Preparação da amostra extraída a analisar
Deixar o extracto (12.4.2) em repouso até atingir a temperatura ambiente.
Pipetar 2 ml da fase alcoólica da amostra extraída à temperatura ambiente para um balão volumétrico de 20 ml, completar o volume com etanol a 45 % vol. (4.4) e homogeneizar bem.
12.5. Determinação
Proceder como indicado em 8.5.
12.6. Cálculo dos resultados
Os resultados são calculados pela seguinte fórmula:
Ci = (mpi/V)* (áreai/áreapi) *RFi
Em que:
mpi é a massa (em miligrama) de padrão interno (4.3) tomada (12.4.2)
V é o volume da amostra de teor desconhecido (50 ml)
RFi é o factor de resposta (9.1)
áreai é a área do pico do trans-anetole
áreapi é a área do pico do padrão interno
Os resultados são expressos em grama por litro, com uma casa decimal.
12.7. Garantia de qualidade e controlo de qualidade
Proceder como indicado em 11.
13. Características operacionais do método (precisão)
Resultados estatísticos do teste interlaboratorial:
Os quadros seguintes reúnem os valores referentes ao anetole.
Os dados a seguir discriminados foram obtidos com base num estudo internacional das características operacionais do método, efectuado segundo uma metodologia internacionalmente acordada.
>POSIÇÃO NUMA TABELA>
>POSIÇÃO NUMA TABELA>
Tipos de amostra:
A Pastis, duplicados cegos
B Pastis, duplicados cegos
C Pastis, duplicados cegos
D Pastis, duplicados cegos
E Pastis, amostra singela
F Pastis, amostra singela
>POSIÇÃO NUMA TABELA>
Tipos de amostra:
G Ouzo, duplicados com teores diferentes (*)
H Anis, duplicados cegos
I Licor anisado, duplicados
J Licor anisado, duplicados
VI. ÁCIDO GLICIRRÍZICO. DETERMINAÇÃO DO ÁCIDO GLICIRRÍZICO POR CROMATOGRAFIA LÍQUIDA DE ALTA EFICIÊNCIA
1. Âmbito
Este método é adequado para a determinação do ácido glicirrízico em bebidas espirituosas anisadas por cromatografia líquida de alta eficiência (HPLC). O Regulamento (CEE) n.o 1576/89 especifica que a bebida espirituosa anisada denominada “pastis” deve conter entre 0,05 g e 0,5 g de ácido glicirrízico por litro.
2. Referências normativas
ISO 3696:1987 Water for analytical laboratory use – Specifications and test methods (Água para fins laboratoriais analíticos – Especificações e métodos de ensaio).
3. Princípio
Determinação da concentração de ácido glicirrízico por cromatografia líquida de alta eficiência (HPLC), com detecção no ultravioleta. Filtração de uma solução-padrão e da toma para análise e injecção directa de ambas, separadamente, no sistema cromatográfico de HPLC.
4. Material e reagentes
Utilizar nas análises apenas reagentes para HPLC, etanol absoluto e água de grau 3 (escala da norma ISO 3696).
4.1. Etanol a 96 % vol. (CAS 64-17-5)
4.2. Glicirrizinato de amónio, C42H62O16.NH3 (sal de amónio do ácido glicirrízico)
Massa molecular: 839,98; CAS 53956-04-0; grau de pureza mínimo: 90 %.
Massa molecular do ácido glicirrízico: 822,94.
4.3. Ácido acético glacial, CH3COOH (CAS 64-19-7)
4.4. Metanol, CH3OH (CAS 67-56-1)
4.5. Etanol a 50 % vol.
Para preparar 1000 ml, a 20 °C:
– 521 ml de etanol a 96 % vol. (4.1),
– 511 ml de água (2.0).
4.6. Preparação das soluções de eluição para a HPLC
4.6.1. Solvente de eluição A (exemplo)
80 partes (por volume) de água (2.0)
20 partes (por volume) de ácido acético (4.3)
Desgasificar o solvente de eluição durante cinco minutos.
Nota:
Se a água utilizada não tiver sido microfiltrada, é conveniente filtrar o solvente de eluição preparado com um filtro para solventes orgânicos, de porosidade igual ou inferior a 0,45 μm.
4.6.2. Solvente de eluição B
Metanol (4.4).
4.7. Preparação das soluções-padrão
Todas as soluções-padrão devem ser preparadas de fresco após dois meses.
4.7.1. Solução de referência C
Pesar, com a aproximação de 0,1 mg, 25 mg de glicirrizinato de amónio (4.2) num balão volumétrico de 100 ml. Adicionar um pouco de etanol a 50 % vol (4.5) e dissolver o glicirrizinato de amónio. Uma vez dissolvido, completar o volume até ao traço de aferição com etanol a 50 % vol (4.5).
Filtrar com um filtro para solventes orgânicos.
4.7.2. Soluções-padrão (utilizadas para verificar a linearidade de resposta dos aparelhos)
Preparar uma solução de reserva de 1,0 g/l, pesando, com a aproximação de 0,1 mg, 100 mg de glicirrizinato de amónio num balão volumétrico de 100 ml. Adicionar um pouco de etanol a 50 % vol (4.5) e dissolver o glicirrizinato de amónio. Uma vez dissolvido, completar o volume até ao traço de aferição com etanol a 50 % vol. (4.5).
Preparar, pelo menos, quatro outras soluções de 0,05 g/l, 0,1 g/l, 0,25 g/l e 0,5 g/l de glicirrizinato de amónio, pipetando, respectivamente, 5 ml, 10 ml, 25 ml e 50 ml da solução de reserva de 1,0 g/l para uma série de balões volumétricos de 100 ml. Completar o volume até ao traço de aferição com etanol a 50 % vol. (4.5) e homogeneizar bem.
Filtrar todas as soluções com um filtro para solventes orgânicos.
5. Aparelhagem e equipamento
5.1. Sistema de separação
5.1.1. Equipamento para cromatografia líquida de alta eficiência
5.1.2. Sistema de bombagem que permita obter e manter um caudal constante ou programado com grande precisão
5.1.3. Sistema espectrofotométrico de detecção no ultravioleta, regulado para 254 nm
5.1.4. Sistema de desgasificação do solvente
5.2. Integrador ou registador informatizado, de características compatíveis com o resto do sistema
5.3. Coluna (exemplo):
Material: aço inoxidável ou vidro
Diâmetro interno: 4 mm a 5 mm
Comprimento: 100 mm a 250 mm
Fase estacionária: sílica reticulada com um grupo funcional octadecílico (C18, de preferência esférico) e granulometria máxima de 5 μm.
5.4. Equipamento de laboratório
5.4.1. Balança analítica com a precisão de 0,1 mg
5.4.2. Material de vidro volumétrico da classe A
5.4.3. Dispositivo de membranas microfiltrantes para volumes pequenos
6. Condições cromatográficas
6.1. Eluição (exemplo):
– Caudal: 1 ml/minuto,
– solvente A = 30 %,
– solvente B = 70 %.
6.2. Detecção:
– UV = 254 nm
7. Técnica
7.1. Preparação da amostra de bebida espirituosa
Se necessário, filtrar com um filtro para solventes orgânicos (porosidade de 0,45 μm).
7.2. Determinação
Depois de estabilizadas as condições cromatográficas:
– injectar 20 μl da solução de referência C (4.7.1),
– injectar 20 μl da solução da amostra,
– comparar os dois cromatogramas. Identificar os picos do ácido glicirrízico a partir dos tempos de retenção respectivos. Medir as áreas (ou alturas) desses picos e calcular a concentração em g/l, com duas casas decimais, utilizando a seguinte equação:
>REFERÊNCIA A UM GRÁFICO>
Em que:
c é a concentração, em grama por litro, de ácido glicirrízico na bebida espirituosa analisada;
C é a concentração, em grama por litro, de glicirrizinato de amónio na solução de referência,
h é a área (ou altura) do pico do ácido glicirrízico da bebida espirituosa analisada,
H é a área (ou altura) do pico do ácido glicirrízico da solução de referência
P é o grau de pureza, em percentagem, do glicirrizinato de amónio de referência
823 é a massa de uma mole de ácido glicirrízico
840 é a massa de uma mole de glicirrizinato de amónio
8. Características operacionais do método (precisão)
Resultados estatísticos do teste interlaboratorial:
O quadro seguinte reúne os valores referentes ao ácido glicirrízico.
Os dados a seguir discriminados foram obtidos com base num estudo internacional das características operacionais do método, efectuado segundo uma metodologia internacionalmente acordada.
>POSIÇÃO NUMA TABELA>
>POSIÇÃO NUMA TABELA>
Tipos de amostra:
A Pastis, duplicados cegos
B Pastis, duplicados com teores diferentes (*)
C Pastis, duplicados cegos
D Pastis, duplicados cegos
E Pastis, duplicados cegos
VII. CALCONAS. MÉTODO DE VERIFICAÇÃO DA PRESENÇA DE CALCONAS EM PASTIS POR CROMATOGRAFIA LÍQUIDA DE ALTA EFICIÊNCIA
1. Âmbito
Este método é adequado para a pesquisa de calconas em bebidas espirituosas anisadas. As calconas são corantes da família dos flavonóides naturalmente presentes na raiz do alcaçuz (Glycyrrhiza glabra).
Uma bebida espirituosa só poderá ser designada por “pastis” se contiver calconas [Regulamento (CEE) n.o 1576/89].
2. Referências normativas
ISO 3696:1987 Water for analytical laboratory use – Specifications and test methods (Água para fins laboratoriais analíticos – Especificações e métodos de ensaio).
3. Princípio
Preparação de uma solução de referência de extracto de alcaçuz. Determinação da presença ou ausência de calconas por cromatografia líquida de alta eficiência (HPLC), com detecção no ultravioleta.
4. Material e reagentes
Utilizar nas análises apenas reagentes para HPLC. Utilizar etanol a 96 % vol. Utilizar exclusivamente água de grau 3 (escala da norma ISO 3696).
4.1. Etanol a 96 % vol. (CAS 64-17-5)
4.2. Acetonitrilo, CH3CN (CAS 75-05-8)
4.3. Substância de referência: Glycyrrhiza glabra (alcaçuz)
Raízes de alcaçuz (Glycyrrhiza glabra) trituradas. Dimensões médias dos fragmentos: 10-15 mm de comprimento; 1-3 mm de espessura.
4.4. Acetato de sódio, CH3COONa (CAS 127-09-3)
4.5. Ácido acético glacial, CH3COOH (CAS 64-19-7)
4.6. Preparação das soluções
4.6.1. Etanol a 50 % vol
Para preparar 1000 ml, a 20 °C:
– etanol a 96 % vol. (4.1): 521 ml,
– água (2.0): 511 ml.
4.6.2. Solvente A: acetonitrilo
Acetonitrilo (4.2) para HPLC.
Desgasificar.
4.6.3. Solvente B: solução tampão 0,1 M de acetato de sódio, pH 4,66
Pesar 8,203 g de acetato de sódio (4.4), juntar 6,005 g de ácido acético glacial (4.5) e completar o volume até 1000 ml com água (2) num balão volumétrico.
5. Preparação do extracto de referência de glycyrrhiza glabra (4.3)
5.1. Pesar 10 g de raiz de alcaçuz (Glycyrrhiza glabra) (4.3) triturada para um balão de destilação de fundo plano.
– Adicionar 100 ml de etanol a 50 % vol. (4.6.1).
– Manter em ebulição sob refluxo durante uma hora.
– Filtrar.
– Guardar o filtrado para mais tarde.
5.2. Recuperação do extracto de alcaçuz do filtro
– Colocar o filtro num balão de destilação de fundo plano.
– Adicionar 100 ml de etanol a 50 % vol. (4.6.1).
– Manter em ebulição sob refluxo durante uma hora.
– Filtrar. Guardar o filtrado para mais tarde.
5.3. Efectuar a extracção da raiz de alcaçuz por três vezes, sucessivamente
5.4. Juntar os três filtrados
5.5. Evaporar o solvente (de 5.4) num evaporador rotativo
5.6. Adicionar 100 ml de etanol a 50 % vol. (4.6.1) ao resíduo do extracto (de 5.5)
6. Aparelhagem e equipamento
6.1. Sistema de separação
6.1.1. Equipamento para cromatografia líquida de alta eficiência
6.1.2. Sistema de bombagem que permita obter e manter um caudal constante ou programado a alta pressão.
6.1.3. Sistema espectrofotométrico de detecção no ultravioleta/visível, regulável para 254 nm e 370 nm.
6.1.4. Sistema de desgasificação do solvente.
6.1.5. Fornalha da coluna, regulável a 40 °C ± 0,1 °C.
6.2. Integrador ou registador informatizado, de características compatíveis com o resto do sistema de separação.
6.3. Coluna
Material: aço inoxidável ou vidro
Diâmetro interno: 4 mm a 5 mm
Fase estacionária: sílica reticulada com um grupo funcional octadecílico (C18) e granulometria máxima de 5 μm (fase reticulada).
6.4. Equipamento corrente de laboratório, nomeadamente:
6.4.1. Balança analítica (precisão ± 0,1 mg).
6.4.2. Dispositivo de destilação com condensador de refluxo, incluindo, por exemplo:
– um balão de fundo plano de 250 ml com junta de vidro esmerilado normalizada,
– um condensador de refluxo de 30 cm, e
– uma fonte de calor (tomar as providências necessárias para evitar qualquer reacção pirogénica das matérias em extracção).
6.4.3. Evaporador rotativo
6.4.4. Dispositivo de filtração (funil de Büchner)
6.5. Condições cromatográficas (exemplo)
6.5.1. Condições de eluição dos solventes A (4.6.2) e B (4.6.3):
– gradiente de variação de 20/80 (v/v) para 50/50 (v/v) em 15 minutos,
– gradiente de variação de 50/50 (v/v) para 75/25 (v/v) em cinco minutos,
– manutenção a 75/25 (v/v) durante cinco minutos,
– estabilização da coluna entre as injecções,
– manutenção a 20/80 (v/v) durante cinco minutos.
6.5.2. Caudal: 1 ml/minuto
6.5.3. Regulação do detector de UV:
Regular o detector para 370 nm para a detecção da presença de calconas e, em seguida, para 254 nm, para a detecção do ácido glicirrízico.
Nota:
A mudança de comprimento de onda (de 370 nm para 254 nm) deve ser efectuada 30 segundos antes do início do pico de eluição do ácido glicirrízico.
7. Técnica
7.1. Preparação da amostra de bebida espirituosa
Filtrar com um filtro para solventes orgânicos (porosidade de 0,45 μm).
7.2. Preparação do extracto residual de alcaçuz (5.6)
Preparar uma diluição 1:10 com etanol a 50 % vol. (4.6.1) antes da análise.
7.3. Determinação.
7.3.1. Injectar 20 μl do extracto de alcaçuz preparado (7.2). Efectuar a análise nas condições cromatográficas acima descritas (6.5).
7.3.2. Injectar 20 μl da amostra (7.1) da bebida espirituosa anisada. Efectuar a análise nas condições cromatográficas acima descritas (6.5).
7.3.3. Comparar os dois cromatogramas. Devem ser muito semelhantes na zona de saída das calconas, durante a detecção a 370 nm nas condições cromatográficas acima descritas (ver a figura 1).
8. Cromatograma característico de um pastis
Figura 1:
Cromatograma obtido pelo método acima descrito, revelador da presença de calconas num “pastis”. Os picos 1 a 8 correspondem às calconas; o pico 9 ao ácido glicirrízico.
>PIC FILE= “L_2002322PT.002301.TIF”>
9. Características operacionais do método (precisão)
Resultados do teste interlaboratorial:
O quadro seguinte apresenta as características operacionais do método de reconhecimento da presença ou ausência de calconas em “pastis” e bebidas espirituosas anisadas.
Os dados a seguir discriminados foram obtidos com base num estudo internacional das características operacionais do método, efectuado segundo uma metodologia internacionalmente acordada.
>POSIÇÃO NUMA TABELA>
>POSIÇÃO NUMA TABELA>
>POSIÇÃO NUMA TABELA>
Tipos de amostra:
A Pastis, duplicados cegos
B Pastis, amostra singela
C Pastis, amostra singela
D “Pastis” (sem calconas), duplicados cegos
E “Pastis” (sem calconas), duplicados cegos
F Licor anisado (sem calconas), duplicados cegos
G Licor anisado (sem calconas), duplicados cegos
H Ouzo (sem calconas), amostra singela
I Ouzo (sem calconas), amostra singela
J Anis (sem calconas), duplicados cegos
K “Pastis” (sem calconas), duplicados cegos
IX. GEMA DE OVO. DETERMINAÇÃO DA CONCENTRAÇÃO DE GEMA DE OVO EM BEBIDAS ESPIRITUOSAS – MÉTODO FOTOMÉTRICO
1. Âmbito
Este método é adequado para a determinação de concentrações de gema de ovo entre 40 g/l e 250 g/l em licores de ovos e licores à base de ovos.
2. Referências normativas
ISO 3696:1897 Water for analytical laboratory use – Specifications and test methods (Água para fins laboratoriais analíticos – Especificações e métodos de ensaio).
3. Princípio
Extracção dos compostos de fósforo solúveis em etanol existentes na gema de ovo e determinação fotométrica dos mesmos na forma de um complexo de fosfomolibdato.
4. Material e reagentes
4.1. Água bidestilada.
4.2. Terra de diatomáceas.
4.3. Etanol a 96 % vol (CAS 64-17-5).
4.4. Solução a 15 % de acetato de magnésio (CAS 16674-78-5).
4.5. Ácido sulfúrico a 10 % (CAS 7664-93-9).
4.6. Ácido sulfúrico 1 N.
4.7. Solução 0,16 g/l de di-hidrogenofosfato de potássio, KH2PO4 (CAS 778-77-0).
4.8. Reagente para a determinação dos fosfatos:
Dissolver 20 g de molibdato de amónio, (NH4)6Mo7O24.4H2O (CAS 12054-85-2), em 400 ml de água a 50 °C.
Dissolver, noutro recipiente, 1 g de vanadato de amónio, NH4VO3 (CAS 7803-55-6), em 300 ml de água quente; deixar arrefecer e adicionar 140 ml de ácido nítrico concentrado (CAS 7697-37-2). Juntar as soluções arrefecidas num balão volumétrico de 1000 ml e completar o volume até ao traço de aferição.
5. Aparelhagem e equipamento
5.1. Erlenmeyer de 100 ml.
5.2. Banho de ultra-sons (ou agitador magnético).
5.3. Balão volumétrico de 100 ml.
5.4. Banho de água a 20 °C.
5.5. Filtro (Whatman n.o 4 ou equivalente).
5.6. Cadinho de porcelana (ou de platina).
5.7. Banho de água fervente.
5.8. Placa de aquecimento.
5.9. Mufla.
5.10. Balão volumétrico de 50 ml.
5.11. Balão volumétrico de 20 ml.
5.12. Espectrofotómetro regulado para 420 nm.
5.13. Célula de 1 cm.
6. Amostras
As amostras devem ser armazenadas à temperatura ambiente até às análises.
7. Técnica
7.1. Preparação da amostra
7.1.1. Pesar 10 g da amostra num erlenmeyer de 100 ml (5.1).
7.1.2. Adicionar gradualmente, em pequenas quantidades, 70 ml de etanol (4.3), agitando após cada adição; colocar o recipiente num banho de ultra-sons (5.2) durante 15 minutos (ou agitar a mistura com um agitador magnético (5.2), durante 10 minutos, à temperatura ambiente).
7.1.3. Transferir o conteúdo do erlenmeyer para um balão volumétrico de 100 ml (5.3), lavando com etanol (4.3). Completar o volume com etanol (4.3) até ao traço de aferição e colocar o balão num banho de água a 20 °C (5.4). Completar o volume até ao traço de aferição, a 20 °C.
7.1.4. Adicionar uma pequena quantidade de terra de diatomáceas (4.2) e filtrar (5.5), rejeitando os primeiros 20 ml.
7.1.5. Transferir 25 ml do filtrado para um cadinho de porcelana (ou de platina) (5.6). Concentrar, em seguida, o filtrado por evaporação suave num banho de água fervente (5.7), adicionando 5 ml da solução a 15 % de acetato de magnésio (4.4).
7.1.6. Colocar o cadinho numa placa de aquecimento (5.8) e aquecer até à secura.
7.1.7. Incinerar o resíduo, por aquecimento até à incandescência, a 600 °C, numa mufla (5.9), até as cinzas ficarem brancas, no mínimo durante 1,5 horas (mas podendo ser deixado de um dia para o outro).
7.1.8. Juntar 10 ml de ácido sulfúrico a 10 % (4.5) às cinzas e transferir a solução resultante, com lavagens sucessivas de água destilada (4.1), para um balão volumétrico de 50 ml (5.10); completar o volume até ao traço de aferição, à temperatura ambiente, com água destilada (4.1). Utilizar uma alíquota de 5 ml desta solução de cinzas na preparação da solução-amostra para a determinação fotométrica dos fosfatos.
7.2. Determinação fotométrica dos fosfatos.
7.2.1. Solução de comparação.
7.2.1.1. Deitar 10 ml de ácido sulfúrico a 10 % (4.5) num balão volumétrico de 50 ml (5.10) e completar o volume com água destilada até ao traço de aferição (4.1).
7.2.1.2. Num balão volumétrico de 20 ml (5.11), juntar a uma alíquota de 5 ml desta solução (7.2.1.1) 1 ml de ácido sulfúrico 1 N (4.6) e 2 ml do reagente para a determinação dos fosfatos (4.8); completar o volume até 20 ml com água destilada (4.1).
7.2.1.3. Tapar, mantendo a tampa solta, agitar e aquecer o balão num banho de água fervente (5.7), durante 10 minutos, arrefecendo depois num banho de água a 20 °C (5.4), durante 20 minutos.
7.2.1.4. Encher uma célula de 1 cm (5.13) com esta solução de comparação.
7.2.2. Solução-amostra.
7.2.2.1. Num balão volumétrico de 20 ml (5.11), juntar a uma alíquota de 5 ml da solução de cinzas (7.1.8) 1 ml de ácido sulfúrico 1 N (4.6) e 2 ml do reagente para a determinação dos fosfatos (4.8); completar o volume até 20 ml com água destilada (4.1).
7.2.2.2. Tapar, mantendo a tampa solta, agitar e aquecer o balão num banho de água fervente (5.7), durante 10 minutos, arrefecendo depois num banho de água a 20 °C (5.4), durante 20 minutos.
7.2.2.3. Analisar de imediato, por espectrofotometria (5.12), a solução amarela formada, numa célula de 1 cm (5.13), a 420 nm, em relação à solução de comparação (7.2.1.4).
7.2.3. Curva de calibração.
7.2.3.1. Para traçar a curva de calibração, juntar alíquotas de 2 ml do reagente para a determinação dos fosfatos (4.8) a uma série de balões volumétricos de 20 ml (5.11) que já contenham 1 ml de ácido sulfúrico 1 N (4.6) e, respectivamente, 0, 2, 4, 6, 8 e 10 ml da solução de di-hidrogenofosfato de potássio (4.7); completar os volumes até ao traço de aferição de 20 ml com água destilada (4.1).
7.2.3.2. Tapar, mantendo a tampa solta, agitar e aquecer os balões num banho de água fervente (5.7), durante 10 minutos, arrefecendo depois num banho de água a 20 °C (5.4), durante 20 minutos; efectuar a análise espectrofotométrica (5.12), numa célula de 1 cm (5.13), a 420 nm, em relação à solução de comparação (7.2.1.4).
7.2.3.3. Traçado da curva de calibração:
>POSIÇÃO NUMA TABELA>
8. Expressão dos resultados
O teor de gema de ovo, em g/l, é calculado pela seguinte fórmula:
>REFERÊNCIA A UM GRÁFICO>
Em que:
110 factor de conversão em P2O5 total, em g por 100 g de gema de ovo,
mg de P2O5 valor determinado pela curva de calibração,
densidade massa por unidade de volume (g/ml) do licor à base de gema de ovo, a 20 °C,
E massa, em g, do licor à base de gema de ovo,
40 factor de diluição da alíquota de 5 ml da solução de cinzas.
9. Características operacionais do método (precisão)
Resultados estatísticos do teste interlaboratorial:
O quadro seguinte reúne os valores referentes à gema de ovo.
Os dados a seguir discriminados foram obtidos com base num estudo internacional das características operacionais do método, efectuado segundo uma metodologia internacionalmente acordada.
>POSIÇÃO NUMA TABELA>
>POSIÇÃO NUMA TABELA>
Tipos de amostra:
A Advocaat, Duplicados cegos
B Advocaat, Duplicados cegos
C Advocaat, Duplicados cegos
D Advocaat (diluído), Duplicados com teores diferentes (*)
E Advocaat,Duplicadoscegos